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全质粒测序

全质粒测序

全质粒测序

  • 从完整质粒到高精度序列图谱的直接读取方案,凭借纳米孔超长读长优势,无需PCR扩增与引物设计,直接一次性测通完整质粒序列,轻松应对高GC、重复序列等复杂区域。提供从样本到高质量共识序列与可视化分析报告的快速、可靠的一站式解决方案。

应用方向

  • 基因克隆与载体构建验证
  • 基因治疗载体质粒质控
  • 疫苗研发与生产质控
  • 生物制药生产细胞库质控

诺禾优势

  • 极速交付:依托长读长测序原理,最快可在12小时内完成从样本到分析报告的全程交付。
  • 无惧复杂:超长读长直接跨越质粒中高GC、重复序列等复杂区域,实现一次性完整测通。
  • 无需引物:单分子测序无需预先设计合成引物,简化实验流程,显著节省时间与引物成本。
  • 交付全面:除一致性序列外,同步提供覆盖度图、突变列表及原始数据等全方位结果,分析更直观。
  • 性价比高:单次反应即可获得全长序列,显著节省时间与成本。

信息分析

送样建议

  • (1)菌液样本

    新鲜菌液≥1ml,或提供沉淀菌体(用于质粒提取);
  • 2)质粒样本:

    浓度:Qubit 定量≥10ng/μl,20μl,电泳可见明显条带。
    纯度:OD260/280=1.8-2.0,OD260/230=2.0-2.2,不含去污剂、盐、蛋白等杂质;
    用量:体积≥10μl,总量≥200ng(50kb 以上大质粒需≥600ng);
    溶解液:用超纯水(双蒸水 / Milli-Q),勿用 TE 缓冲液(影响测序效果)。
  • 3)样本打包和寄送建议

    核酸样品建议使用1.5ml或2ml 低吸附EP管装载样品,并用封口膜封口,冰袋运输

常见问题(FAQ)

  • 1.全质粒测序和传统的 Sanger 测序有什么区别?

    • 核心区别在测序范围、复杂区域覆盖能力和结果完整性。传统 Sanger 测序是 “片段测序”,仅能测 1kb 以内的目的基因或特定区域,无法覆盖高 GC、重复序列等复杂区域,且需拼接推测整体结构;全质粒测序(尤其基于纳米孔平台)能测通质粒全长,直接覆盖目的基因、载体骨架等所有区域,无需拼接,还能精准检出低丰度突变,更适合完整验证和质控。
  • 2.纳米孔测序与Sanger测序相比有哪些优势?

    • 读长长:单条读长可覆盖完整质粒(最长可达数十kb),无需拼接。
      检测范围广:可识别结构变异、多聚体、重复序列、混合样本。
      无偏好性:无扩增建库减少序列偏好性,更反映真实样本组成。
      信息丰富:除序列外,还可提供深度、覆盖度、突变频率等多维度数据。
  • 3.如何判断测序结果是否可靠?

    • 查看 覆盖度图:深度应均匀,无明显缺口或尖峰。
      查看 突变列表:高频突变(>30%)在非Poly区域通常可信。
      查看 片段长度分布图:应有明确主峰,且与预期长度一致。
      查看 .ab1 色谱图:峰形应连续、清晰,无明显杂峰。
  • 4.什么是“多聚体(concatemer)”?是否影响结果?

    • 多聚体是质粒在体内复制过程中形成的连环体(如二聚体、三聚体)。
      本流程默认返回 单体序列,多聚体比例在 _multimer_analysis.txt 中显示。
      多聚体不影响序列准确性,且可通过未切割琼脂糖凝胶电泳验证。
  • 5.如果样本为混合质粒(多个物种),会得到什么结果?

    • 分析流程将优先为 数据量最大的物种 生成一致性序列。
      若混合物种间序列高度相似,则 .ab1 中可能出现混合峰,.var.xls 中列出突变。
      若物种差异显著,建议分别克隆后送检,或联系客服定制分析方案。
  • 6.测序失败是否收费?能否重测?

    • 完全测序失败(无数据产出):不收费,可免费重测一次(限同一样本)。
      测序完成但分析异常:收取测序费,可免费重分析一次。
      风险样本测序失败:按实际数据产出情况判断是否收费。
  • 7.如何判定组装得到的质粒序列是完整的环状结构?

    • 目标质粒本身是闭合环状 DNA,但在 Nanopore 测序建库与测序过程中,DNA 会被随机打断为线性长片段进行测序。我们使用的 Flye 组装软件针对长读长进行了优化,具备识别重复序列与环状结构的能力。在组装过程中,软件将所有测序得到的线性片段进行拼接。如果该质粒真实为环状,拼接所得的序列(contig)头部与尾部会存在显著的同源重叠区域。Flye 软件识别到这种首尾重叠后,会自动将序列两端进行“粘合”与调整,最终输出完整的环状质粒序列。因此,若最终组装结果呈现为单一环状 contig,即表明组装成功。
  • 8.什么情况算“测序失败”?主要原因有哪些?

    • 对于质粒测序,“失败”意味着您的样本没能产生足够数量和质量的数据,无法组装出靠谱的一致性序列。我们价格实惠、周期短,所以不包含对失败原因进行深度排查的服务。但根据经验,失败最常见的原因就两个:
      1.样本DNA浓度不够:
      这通常是因为用了Nanodrop来定量DNA。Nanodrop容易受杂质干扰导致数值虚高,强烈建议使用Qubit或同级别的荧光染料法进行定量。
      怎么发现? 可以看看原始读长长度分布图,如果总数据量很少;或者看看覆盖度,如果很低,可能就是这个问题。
      2.样本太杂:
      比如混有多种质粒,或者污染了大量的基因组DNA片段,或者质粒本身已经断裂了。
      怎么发现? 看看原始读长长度分布图,如果读长长度分布范围非常宽,不成峰,可能就是样本太杂。
      为了确保最好的测序效果,请一定按照我们推荐的样本送样建议来操作。
  • 9.如何制备菌落样本?具体操作步骤是怎样的?

    • 把挑好的菌落重悬后,一分为二,一部分自己留着备份培养,另一部分寄给我们测序。具体操作步骤如下:
      1.挑取单菌落:用无菌枪头(比如20 µL或10 µL的枪头)从培养板上挑取一个单菌落。
      2.重悬:直接将带菌的枪头放入您寄送给我们的样品管中,管内预先加入适量无菌水或TE缓冲液(一般20–50 µL),反复吹打或旋转枪头,使菌落充分重悬。注意:不要加入甘油或培养基,以免影响后续检测。
      3.备份菌种(关键步骤):重悬后,用同一个枪头(不要换新枪头,因为枪头上还沾有少量菌液)立即进行备份操作。

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